處于增殖周期中的細胞，根據其所處不同周期時相（Go/G1、S、G2/M），其DNA含量分布在2n～4n之間。發(fā)生凋亡的細胞由于核內DNA裂解成許多小片段，在酒精固定后，用細胞膜通透劑使小分子量的DNA片段穿過胞膜，使細胞原有的DNA部分丟失，僅剩下大片段DNA，這些細胞在DNA染色后，用流式細胞分析術檢測其DNA含量，會出現一個DNA含量＜2n（即＜G1期細胞的分布區(qū)，稱為“亞G1峰”。因此處于“亞G1峰”的細胞代表樣品中的凋亡細胞。

【樣品來源】

（1）懸浮生長的培養(yǎng)細胞；

（2）貼壁生長的培養(yǎng)細胞經胰蛋白酶消化后的細胞懸液；

（3）離體細胞懸液。

將樣品分組，即空白對照組（未經誘導凋亡處理組）和實驗組（經誘導凋亡處理組）。

【材料與試劑】

（1）PBS緩沖液；

（2）70％酒精；

（3）DNA抽提緩沖液：取 192ml 0.2mol/L Na2 HPO4 ，與8ml 0.1mol/L枸櫞酸混合，調整pH到7.8；

（4）DNA染液：取200μg PI溶于10ml PBS，加入2mg無DNA酶活性的RNA酶。

【操作步驟】

（1）1～5×106 個細胞，用70％酒精固定（-20冰箱），2h以上；

（2）洗滌：離心，棄去酒精，細胞重新懸浮于10ml PBS中，再離心，棄去上清；

（3）DNA片段抽提：將細胞重新懸浮于0.5ml PBS，加入1ml DNA抽提緩沖液，混勻，室溫下靜置5min，離心，棄去上清；

（4）DNA染色：將細胞重新懸浮于1ml DNA染液，室溫下避光染色30min；

（5）流式細胞儀測定：選用波長488nm 藍色激發(fā)光，同時測定紅色熒光和前向角散射光；每例樣品測定5000～10000個細胞。

注：所有離心步驟均為1000r/min，5min。

【結果分析】

實驗組（經誘導凋亡處理組）的 DNA 組方圖上，在G1峰前出現一個呈高斯分布的峰（亞“G1”峰），分析峰的百分比即可得出凋亡細胞的百分比；空白對照組因無凋亡發(fā)生而不出現亞“G1”峰，或有些細胞系可有自發(fā)性細胞凋亡發(fā)生，但其百分比不超過5％；發(fā)生壞死的細胞或機械性損傷之細胞在G1峰前不出現呈高斯分布的亞“G1”峰，但可出現一個連續(xù)的DNA小片段分布曲線，以此可與凋亡區(qū)分開來。

處于增殖周期中的細胞，根據其所處不同周期時相（Go/G1、S、G2/M），其DNA含量分布在2n～4n之間。發(fā)生凋亡的細胞由于核內DNA裂解成許多小片段，在酒精固定后，用細胞膜通透劑使小分子量的DNA片段穿過胞膜，使細胞原有的DNA部分丟失，僅剩下大片段DNA，這些細胞在DNA染色后，用流式細胞分析術檢測其DNA含量，會出現一個DNA含量＜2n（即＜G1期細胞的分布區(qū)，稱為“亞G1峰”。因此處于“亞G1峰”的細胞代表樣品中的凋亡細胞。

【樣品來源】

（1）懸浮生長的培養(yǎng)細胞；

（2）貼壁生長的培養(yǎng)細胞經胰蛋白酶消化后的細胞懸液；

（3）離體細胞懸液。

將樣品分組，即空白對照組（未經誘導凋亡處理組）和實驗組（經誘導凋亡處理組）。

【材料與試劑】

（1）PBS緩沖液；

（2）70％酒精；

（3）DNA抽提緩沖液：取 192ml 0.2mol/L Na2 HPO4 ，與8ml 0.1mol/L枸櫞酸混合，調整pH到7.8；

（4）DNA染液：取200μg PI溶于10ml PBS，加入2mg無DNA酶活性的RNA酶。

【操作步驟】

（1）1～5×106 個細胞，用70％酒精固定（-20冰箱），2h以上；

（2）洗滌：離心，棄去酒精，細胞重新懸浮于10ml PBS中，再離心，棄去上清；

（3）DNA片段抽提：將細胞重新懸浮于0.5ml PBS，加入1ml DNA抽提緩沖液，混勻，室溫下靜置5min，離心，棄去上清；

（4）DNA染色：將細胞重新懸浮于1ml DNA染液，室溫下避光染色30min；

（5）流式細胞儀測定：選用波長488nm 藍色激發(fā)光，同時測定紅色熒光和前向角散射光；每例樣品測定5000～10000個細胞。

注：所有離心步驟均為1000r/min，5min。

【結果分析】

實驗組（經誘導凋亡處理組）的 DNA 組方圖上，在G1峰前出現一個呈高斯分布的峰（亞“G1”峰），分析峰的百分比即可得出凋亡細胞的百分比；空白對照組因無凋亡發(fā)生而不出現亞“G1”峰，或有些細胞系可有自發(fā)性細胞凋亡發(fā)生，但其百分比不超過5％；發(fā)生壞死的細胞或機械性損傷之細胞在G1峰前不出現呈高斯分布的亞“G1”峰，但可出現一個連續(xù)的DNA小片段分布曲線，以此可與凋亡區(qū)分開來。